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更新时间:2026-09-03
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在进行小鼠组织流式细胞术实验时,很多研究人员首先想到的是“需要购买哪些抗体"。实际上,一个合理的流式Panel并不是抗体越多越好,而是应该围绕研究目的、目标细胞和组织特点进行设计。
如果Panel设计不合理,即使仪器检测正常,也可能出现细胞群体无法准确区分、抗体之间信号干扰严重以及最终结果难以解释等问题。
设计小鼠流式Panel的第一步不是选择荧光,而是明确实验问题。
例如,如果研究的是肿瘤免疫微环境,重点可能是CD8⁺ T细胞、Treg、NK细胞、肿瘤相关巨噬细胞以及MDSC;如果研究脾脏免疫组成,则可能更加关注T细胞、B细胞、NK细胞和DC。
因此,同样是小鼠组织流式实验,不同课题对应的Panel可能完-全不同。
流式实验通常可以分为两个层次。
第一类是身份Panel,主要回答“这个细胞是谁"。
例如:
T细胞可以使用CD3、CD4、CD8进行识别;B细胞可以使用CD19或B220;NK细胞可以结合CD3和NKp46;中性粒细胞常使用CD11b和Ly6G;单核细胞则可以进一步结合Ly6C、CD115等标志物。
第二类是功能Panel,主要回答“这个细胞处于什么状态"。
例如T细胞活化可以检测CD69、CD25,耗竭相关研究可以增加PD-1、TIM-3、LAG-3等;细胞因子研究则可以检测IFN-γ、TNF-α等。
因此,如果研究目标比较复杂,可以考虑使用多个Panel,而不是把所有抗体都放进同一管。
对于脾脏、肿瘤、心脏、肠道等组织,常见分析流程可以从FSC/SSC开始,去除明显碎片,然后进行单细胞筛选和活细胞筛选,再进入CD45⁺白细胞群体。
CD45⁺之后再根据研究目标分析淋巴细胞、髓系细胞和其他免疫细胞。
需要注意的是,CD45并不能告诉我们具体是哪一种免疫细胞,它更多承担的是“免疫细胞入口"的作用。
小鼠髓系细胞具有较强的表型重叠,仅使用一个标志物往往不足以完成细胞身份确认。
例如,F4/80⁺并不意味着所有细胞都可以直接定义为成熟巨噬细胞。在组织样本中,建议结合CD11b、CD64、MerTK以及Ly6G、Ly6C等指标进行综合判断。
同样,CD11c⁺MHC-II⁺也不能简单等同于DC,还需要结合XCR1、SIRPα以及CD64/MerTK等标志物进一步排除和确认。
在确定抗体后,还需要考虑荧光搭配。
高表达抗原可以优先考虑较容易检测的荧光,而低表达抗原、功能分子或关键区分标志物则应尽量选择信号较强、与其他通道干扰较小的荧光。
此外,多色流式还需要做好单色补偿和必要的FMO对照。
血液、脾脏、淋巴结、肿瘤、肠道、心脏和主动脉的免疫细胞组成差异明显。
因此,一个适用于外周血的Panel,并不一定适合肿瘤或心脏组织。
流式Panel设计的核心并不是“抗体数量",而是“能否用最少但合理的标志物得到可靠的细胞定义"。
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